PCR實驗室是指能在短時間內(nèi)擴增出目的基因片段的生物工程技術(shù),應(yīng)用于病毒檢測、病原體快速鑒定、個體識別、遺傳診斷及基因等領(lǐng)域。
在此次中, PCR實驗室主要應(yīng)用的技術(shù)包括:病毒全基因組擴增與測序、核酸雜交技術(shù)與熒光原位雜交技術(shù)等。
下面是關(guān)于 PCR實驗室檢測的相關(guān)內(nèi)容,希望能對您有所幫助。
PCR實驗室檢測可分為:樣本前處理和樣本后處理兩個部分:
本文主要介紹樣本前處理中的 PCR實驗室檢測,如有需要也可查看參考文獻或咨詢相關(guān)專業(yè)人士。
由于試劑盒等不能保證完全覆蓋實驗結(jié)果,我們需要根據(jù)實際情況做一些針對性處理,如:核酸擴增的條件是否合適、實驗試劑對實驗結(jié)果影響程度、實驗室人員技術(shù)水平以及實驗室空間等因素都會影響實驗結(jié)果。
一、PCR擴增條件
1.水: PCR擴增的過程中,由于核酸濃度高,需要大量清水,一般采用無菌水進行稀釋到10-50 mg/mL范圍內(nèi);
2.電泳主要是通過施加電壓讓 DNA聚合酶與模板進行化學(xué)結(jié)合,在一定時間內(nèi)將模板復(fù)制出來;
3.引物的種類、濃度以及長度對 PCR結(jié)果有很大影響;
4.模板: PCR擴增反應(yīng)的結(jié)果受模板的影響比較大,因此 PCR實驗室應(yīng)建立自己的模板庫。
5. Taq酶:如果實驗用 Taq酶進行擴增,需根據(jù) DNA反應(yīng)體系選擇適當(dāng)?shù)?Taq酶;
6.擴增產(chǎn)物的分析: PCR實驗室擴增產(chǎn)物可通過質(zhì)譜檢測(LC-MS/MS)。
二、試劑的選擇
實驗中常用的試劑有: DNA凝膠電泳試劑(如: PAGE、SDS-PAGE、 SV或SPE-PCR等)和熒光定量 PCR試劑(如 MassA等)。
DNA凝膠電泳和熒光定量 PCR所用探針的選擇與其擴增效率相關(guān),一般需根據(jù)實驗?zāi)康膩磉x擇探針。
如果實驗需要比較高濃度的引物,應(yīng)選擇非特探針(如: MassA);如果實驗是需要檢測低濃度(例如1μg/μl、5μg/μl)的目標(biāo),則可選擇特探針。
熒光定量 PCR的常用探針有:引物和探針類型是影響檢測結(jié)果的重要因素之一。
不同的檢測方法對于每個步驟都有特殊要求,選擇適當(dāng)類型的引物和正確使用適宜濃度的探針對提高檢測結(jié)果是至關(guān)重要的。
由于不同種類引物可能造成相同區(qū)域重復(fù)擴增,因此應(yīng)盡可能用相同引物和相應(yīng)區(qū)域引物;在相同 PCR反應(yīng)條件下,選擇較合適、較穩(wěn)定且易于保存和使用的引物會得到擴增效果;在相同 PCR條件下,也可以選擇較穩(wěn)定且容易獲得擴增產(chǎn)物的引物-金標(biāo)準(zhǔn)探針,但應(yīng)注意該引物并不能保證一定在擴增反應(yīng)中得到結(jié)果。
三、檢測試劑盒對實驗結(jié)果的影響程度
首先要明確檢測試劑盒對實驗結(jié)果的影響,一般情況下:
如果實驗需要,則需要先用試劑盒進行確認(rèn)。
在實驗過程中,由于使用的試劑較多,可能會出現(xiàn)假陰性情況(即未擴增出核酸)。
由于 PCR檢測的靈敏度和特都很高,對于假陽性結(jié)果應(yīng)立即做其他檢查。如果是特殊情況,如:臨床樣本檢測不到核酸時,可以先使用試劑盒進行確認(rèn)。
最后一個問題:實驗室空間的問題。
四、檢測樣品的保存條件
PCR擴增所需的較適溫度為37℃,在低溫下,擴增效率會明顯降低。
此外還需要注意的是:溫度越高,擴增效率越低。
PCR擴增反應(yīng)需要2-4℃或4-8℃的相對低溫環(huán)境中進行,所以 PCR檢測室要保證環(huán)境溫度在15-30℃。
由于實驗所用液體一般都是有一定粘度和流動性的樣品,為了避免核酸變性、減少樣品變性、降低試劑成本等原因,需要對核酸進行保護(加入 DMSO)以及對核酸進行預(yù)變性以減少變性后引起的假陽性結(jié)果。
1、 DMSO是將反應(yīng)體系中加入質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.1%濃度的 DMSO作為保護劑,其可防止 DNA及 RNA在反應(yīng)中變性和降解;
2、預(yù)變性是指將反應(yīng)體系中的樣品進行適當(dāng)緩沖溶液處理以防止樣品變性,從而提高 PCR擴增效率。預(yù)變性步驟一般可在2-8℃進行。
五、試劑、樣本前處理與后處理
常用的試劑包括:
DNA/RNA (通用試劑):常用的 DNA擴增試劑,例如 Taq酶酶切探針、 dNTP裂解探針等。
酶:酶法 PCR的擴增效率取決于所用的酶種類及濃度,因此在擴增過程中可能需要更換不同的酶。
其他試劑:常規(guī) PCR使用的核酸提取、檢測所需引物,引物及探針等均需要進行制備與優(yōu)化; PCR所需核酸片段(探針),如 DNA片段、DNA-RNA等也需要進行后處理,以保證在 PCR擴增過程中能夠達到要求。
常見實驗樣品有血細胞(血小板等)、腦脊液(細胞和組織)、血清(白蛋白等)及各種生物組織(肌肉和結(jié)締組織等)。
常見實驗項目有血清分析:血清蛋白定量檢測、抗體定量檢測和全血分析;細胞分析:組織活檢和細胞學(xué)檢驗;生物樣本:基因芯片研究與分析。
六、核酸提取方法與步驟(包括但不限于提取 DNA等)
提取核酸需要先將基因組 DNA溶解,然后再進行下一步處理。
目前常用的方法有以下幾種:
1、核酸酶法:利用特酶切反應(yīng),將核酸直接從 DNA模板上切割下來,得到目標(biāo)產(chǎn)物。常見的有 Taq酶、 DNA聚合酶、 RNase。
2、核酸雜交法:利用特雜交反應(yīng),將目的基因轉(zhuǎn)化到靶基因的表達上去;
3、原位雜交法:利用組織、細胞或其他微生物的 DNA作為探針,在靶細胞內(nèi)進行原位檢測;
4、毛細管電泳法:利用毛細管電泳和核酸擴增反應(yīng)相結(jié)合,對靶組織和細胞進行標(biāo)記。
以上都是針對傳統(tǒng)方法存在的問題, PCR實驗室檢測可以根據(jù)實際情況使用相應(yīng)的方法,提高檢測結(jié)果的準(zhǔn)確性。
七、檢測儀器與設(shè)備
PCR檢測儀器與設(shè)備主要有以下幾種:
全自動恒溫擴增儀:
實時熒光定量 PCR儀:
熒光分光光度計:
電子擴增儀或毛細管電泳式自動進樣器,具有擴增效率高、反應(yīng)時間短和檢測范圍廣等優(yōu)點。
液相色譜儀:
液相色譜是一種專門用于分離提純和質(zhì)量控制的小型分析儀器,具有檢測靈敏度高、線性范圍寬、穩(wěn)定性好等優(yōu)點。
詞條
詞條說明
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