提取染色體DNA和質粒DNA的方法

    一、質粒構建原理

    在堿性條件下,染色體DNA和質粒DNA都發(fā)生變性,但質粒DNA的**螺旋共價閉合環(huán)狀結構的兩條互補鏈不會*分離,當用酸性的高鹽緩沖液將pH中和至中性時,變性的質粒DNA又恢復到原來的構型并溶解在溶液中,而染色體DNA不能復性而形成纏連的網狀結構。通過離心,纏結的染色體DNA與不穩(wěn)定的大分子RNA、蛋白質—SDS復合物等一起沉淀下來而被除去。上清液中的質粒DNA因不溶于70%的乙醇,可在加入乙醇后通過離心得到質粒DNA沉淀。

    二、質粒構建試劑

    1、LB培養(yǎng)基

    蛋白胨10g,酵母提取物5gNaCl10g加重蒸水950ml,待*溶解后,用1N NaOH調pH7.0,補加重蒸水至總體積1000ml,151bf/in2高壓蒸氣滅菌20分鐘。

    2、氨芐青霉素:100mg/ml

    3、溶液50mmol/L葡萄糖;25mmol/L Tris—HCl(pH8.0);10mmol/L EDAT(pH8.0)

    4、溶液Ⅱ(臨用時配)0.2mol/L NaOH,1SDS

    5、溶液0.5mol/L乙酸鉀60ml;冰乙酸11.5ml;H2O28.5ml

    6、酚-氯仿:將酚和氯仿等體積混合后用0.1mol/L TrisHCl (pH7.6)抽提幾次以平衡這一混合物,置棕色玻璃瓶中,上面覆蓋0.01mol/L TrisHCl (pH7.6)液層,4℃保存。

    7、氯仿-異戊醇:將氯仿和異戊醇按241的比例混合。

    8、TE緩沖液(pH8.0)10mol/L Tris-HCl(pH8.0)1mmol/L EDAT

    9、RNase 1mg/ml:稱10mg RNaseEppendorf管中,溶于1ml 10mmol/L Tris-HCl(pH7.5)、15mmol/L NaCl溶液中,于100℃加熱15分鐘,緩慢冷卻至室溫,此液為10mg/ml RNase濃度,應用時稀釋至1mg/ml。

    1070%乙醇、無水乙醇

    三、質粒構建操作

    1、將含有pBS-SK質粒的大腸桿菌XL1-blue 10μl接種到10ml含氨芐青霉素(100μg /ml)LB培養(yǎng)液中,37℃振搖過液。

    2、取1.5ml菌液轉入Eppendorf管中,5000rpm離心1分鐘,吸凈上清。

    3、將細菌沉淀重懸于100μl用冰預冷的溶液中,劇烈振蕩。

    4、加200μl新配制的溶液,蓋緊管口,輕緩顛倒Eppendorf5次,以混合內容物,禁止劇烈振蕩。置冰浴中放置5分鐘。

    5、加150μl用冰預冷的溶液,蓋緊管口,反復顛倒數(shù)次,使溶液在粘稠的細菌裂解物中分散均勻,隨后置冰浴中5分鐘。

    6、用微量臺式高速離心機12000rpm 離心5分鐘,將上清轉入另一Eppendorf管中。

    7、加等體積酚-氯仿,劇烈振蕩1分鐘后,12000rpm離心5分鐘,將上層液轉入另一Eppendorf管中。

    8、加等體積氯仿-異戊醇,劇烈振蕩10秒鐘后,短暫離心12000rpm1分鐘,將上層液轉入另一Eppendorf管中。

    9、室溫下加2倍體積的無水乙醇,振蕩混合,室溫下靜置5分鐘。

    10、12000rpm離心5分鐘,去上清液,加1ml 70%乙醇,短暫振搖,然后再離心(12000rpm

     分鐘)。

    11、除去所有上清液,待待殘余乙醇揮發(fā)干凈后,加30μlTE緩沖液(pH8.0)溶解沉淀,加1μl RNase (1mg/ml)37℃保溫15分鐘,取出后即可用于酶切分析或置-20℃保存?zhèn)溆谩?/span>


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    詞條說明

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